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雜交時,為確認蛋白是否轉至PVDF膜上,可用下列方法對膜上蛋白進行可逆性染色。
1.氨基黑染色
染液:0.5% Amido Black (w/v), 25% isopropanol (v/v) and 10% acetic acid.
染色:將 PVDF 膜置于染液中染色數鐘,ddH2O 脫色。
2.考馬氏亮藍染色
染液:0.1% Coomassie Brilliant Blue R-250 (w/v) and 50% methanol (v/v)
脫色液:40% methanol (v/v) with 10% acetic acid (v/v)
染色:將 PVDF 膜置于染液中染色 15 min.,脫色液脫色。
3.麗春紅染色PonceauS
染液:0.2%w/vPonceauSininTCA(3%v/v)
染色:將 PVDF膜置于染液中染色 5min
脫色:ddH2O脫色
三、銀染
PAGE 膠上蛋白質的銀染方法有數百種,其原理相似,具體步驟各不相同。銀染為蛋白質的非特異性染色,呈“爆炸性”反應模式,用于蛋白定量時準確性差,但其敏感度高、簡便易行,仍被廣泛應用。下面列舉的這三種方法為常用的雙向電泳凝膠染色法,可與質譜兼容。其中方法 1 敏感性最高,方法 3 背景最低 、
對比度好。




注意事項:
1.應嚴格按照操作步驟進行;
2.顯色前最好更換新染色盤;
3.顯色時變為黃色或棕色后立即棄去,更換新鮮顯色液,一般來說染一塊膠應配制 500ml 染液。更換 2-3 次;
4.市售甲醛的濃度為 37%;
5.三種方法均與質譜兼容,Blum 法敏感性高,但背景呈淡黃色,EMBL法次之但背景較低,染色點較黑。Vorum 相對不敏感,但背景清晰,信噪比高。
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