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特色產品一、研究背景
DNA損傷是細胞生命周期中持續發生的分子事件。環境因素(如紫外線、化學毒物)及細胞內正常的代謝過程(如氧化呼吸鏈產生的活性氧)均可導致DNA結構改變。據統計,每個細胞每天約發生1000至100萬次分子損傷事件。盡管這一數字相對于人類基因組約60億個堿基(30億個堿基對)的總量而言占比甚微,但若關鍵基因上的損傷未能得到及時修復,將直接影響細胞的正常功能,并顯著增加癌變風險。
彗星檢測,又稱單細胞凝膠電泳,是目前評估單個細胞DNA損傷的常用技術。其基本原理為:在電場作用下,含有碎片和鏈斷裂的受損DNA遷移速度高于完整DNA,從而在顯微鏡下呈現經典的“彗星拖尾”形態。研究人員通常通過測量彗尾長度來半定量評估DNA損傷程度,也可借助圖像分析軟件對尾矩、尾部DNA百分比等多個參數進行精確分析。
二、產品特性與應用場景
由艾美捷代理Cell Biolabs公司推出的OxiSelect 24孔彗星檢測專用玻片(貨號:STA-836),是專為彗星檢測實驗設計的表面處理型玻片。該玻片經過特殊的化學修飾,能夠有效粘附彗星檢測中常用的低熔點瓊脂糖,確保在裂解、電泳等操作步驟中凝膠層不易脫落,從而提高實驗的穩定性和可重復性。
該產品具有以下技術特點:
孔板規格:24孔設計,支持多樣本平行處理,便于進行劑量效應實驗、時間梯度實驗或不同細胞類型的比較研究。
兼容性強:既可與OxiSelect 24孔彗星檢測試劑盒(貨號STA835)中的配套試劑聯合使用,也支持用戶自備的彗星檢測試劑體系。這為已有成熟實驗方案的研究人員提供了靈活選擇。
操作便利:玻片直接適配標準電泳槽和離心轉子,無需自行準備載玻片、包被處理或密封邊緣,顯著簡化實驗流程。
典型應用場景包括:
藥物或環境污染物對細胞DNA損傷程度的篩選與評價
DNA修復機制研究(結合不同時間點的損傷動力學分析)
抗氧化劑或保護劑的功效評估
腫瘤細胞對化療藥物敏感性的檢測
三、操作流程要點
使用該玻片進行彗星檢測時,推薦流程如下:
1.包埋細胞:將待測細胞懸液與熔融的低熔點瓊脂糖混合,迅速滴加至玻片的各孔中,4℃凝固。
2.裂解:加入裂解液(含高濃度鹽和去垢劑)去除細胞膜和可溶性蛋白,暴露核DNA。
3.解旋:堿性條件下(pH > 13)使DNA雙鏈解旋,斷裂位點轉化為單鏈缺口。
4.電泳:在水平電泳槽中進行堿性電泳,受損DNA片段遷移出核區形成彗尾。
5.中和、染色與觀察:中和玻片后,使用DNA熒光染料(如Vista Green)染色,在熒光顯微鏡下采集圖像并分析。
用戶若自備試劑,需確保裂解液、電泳緩沖液和染料的配制符合堿性彗星檢測的標準要求。
四、典型結果示例
以下展示使用該玻片獲得的代表性實驗結果,數據僅供技術參考,不宜直接用于解釋實際檢測結果。


圖1. 依托泊苷對Jurkat細胞的處理。在進行彗星實驗(堿性電泳條件,33 V/300 mA,持續15分鐘)前,Jurkat細胞未處理(左)或用20 ?M依托泊苷處理(右)4小時。
Jurkat細胞(人T細胞白血病細胞系)分為兩組:
未處理組(圖左):細胞核呈圓形或橢圓形,熒光均勻,無明顯的彗尾拖尾現象,表明DNA保持完整。
處理組(圖右):加入20 ?M依托泊苷(一種拓撲異構酶II抑制劑,可誘導DNA鏈斷裂)處理4小時后,在相同電泳條件下(堿性電泳,33 V,300 mA,15分鐘),細胞核出現明顯的彗星狀拖尾,彗尾長度和尾部熒光強度顯著增加,表明DNA發生了大量鏈斷裂。
該結果驗證了該玻片能夠清晰區分不同DNA損傷程度的細胞樣本,且背景低、孔間重復性良好。
五、注意事項
1. 玻片為一次性使用耗材,不可重復利用,以免表面化學處理層失效。
2. 低熔點瓊脂糖的加熱溫度不宜過高(通常加熱至約70℃溶解后冷卻至37℃左右與細胞混合),以免造成細胞熱損傷。
3. 電泳條件(電壓、電流、時間)需根據細胞類型和損傷程度進行預實驗優化。
4. 染色后應盡快在熒光顯微鏡下觀察和拍照,避免熒光淬滅。
文獻參考:
1. Ostling, O., and Johanson, K. J. (1984). Micro gel electrophoretic study of radiation induced DNA
damages in individual mammalian cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 123, 291–298.
2. Singh, N. P., McCoy, M. T., Tice, R. R., and Schneider, E. L. (1988). A simple technique for
quantification of low levels of DNA damage in individual cells. Exp. Cell. Res. 175, 184–191.
3. Olive, P. L., Banath, J. P., and Durand, R. E. (1990a). Heterogeneity in radiation induced DNA
damage and repair in tumor and normal cells using the "Comet" assay. Radiat. Res. 122, 86–94.
4. De Boeck, M., Touil, N., De Visscher, G., Vande, P. A., and KirschVolders, M. (2000). Validation
and implementation of an internal standard in Comet assay. Mutat. Res. 469, 181–197.

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